Soutenance de Thèse de Benjamin Ravaux – 28 Octobre 2016

“Influence du battement du flagelle et de la composition lipidique du spermatozoïde sur l’étape de fusion des gamètes chez le mammifère”.

Abstract :

La fécondation est la rencontre de deux gamètes. Bien que centrale chez les espèces sexuées, la chronologie des mécanismes membranaires et moléculaires n’est pas établie de façon précise. Par ailleurs, la communauté scientifique bute toujours sur la question centrale : Comment le spermatozoïde fusionne-t-il avec l’ovule ? Ces 30 dernières années, les efforts ont essentiellement porté sur la détermination d’un couple ligand-récepteur responsable de la fusion des gamètes. Si des études récentes ont permis d’identifier trois protéines essentielles à la fusion : Izumo1 sur le spermatozoïde, Juno (son récepteur) et CD9 sur la membrane de l’ovocyte, elles montrent également que ces protéines ne sont pas suffisantes et que d’autres facteurs sont impliqués. Notre étude avait pour but d’identifier et caractériser des paramètres autres que protéiques impliqués dans la machinerie de fusion gamétique. Nous nous sommes focalisés sur la contribution des lipides spermatiques et sur celle du battement du flagelle lors de l’interaction du spermatozoïde avec l’ovocyte. Pour cette étude, nous avons développé deux méthodes expérimentales originales, opposées dans leurs approches mais parfaitement complémentaires. Avec la première, qualifiée de « Bottom-up », nous avons tenté d’identifier la machinerie spermatique minimale pour induire la fusion avec l’ovocyte. L’idée était de reconstituer pas à pas la membrane de la tête du spermatozoïde sous forme d’une membrane biomimétique composée d’abord des lipides spermatiques identifiés lors des analyses lipidiques des têtes spermatiques, puis en y incorporant la protéine Izumo1. Nous avons analysé les propriétés physico-chimiques des membranes obtenues à chacune de ces étapes et testé leur capacité fusogène en mesurant les énergies d’activation de la fusion de ces systèmes biomimétiques et en étudiant leurs interactions avec des ovocytes. Pour la seconde approche, appelée « Top-down », nous avons développé un outil microfluidique permettant de guider le spermatozoïde à un endroit prédéfini de l’ovocyte et de suivre la rencontre des gamètes avec le « meilleur » point de vue dans des conditions aussi physiologiques que possible. Nous avons ainsi découvert que contrairement à ce qu’on pensait du battement du flagelle, celui-ci ne sert pas seulement à amener le spermatozoïde jusqu’à l’ovocyte, mais il sert aussi à déclencher la fécondation après l’entrée en contact des gamètes, et encore… seulement s’il bat selon un mode bien précis que nous avons caractérisé. Les contraintes mécaniques générées par ce battement déclenchent une réorganisation de la membrane de l’ovocyte incluant la protéine CD9, dont on a établi la cinétique de recrutement dans la zone de contact des gamètes menant à la fusion. Enfin le timing précis de la cascade d’événements aboutissant au mélange des ADN des deux gamètes a été obtenu avec une résolution temporelle inégalée de l’ordre de la minute.

 

Thesis Defense of Claire François-Martin – 8 April 2016

Summary :

In vivo, membrane fusion must not occur spontaneously. Thus, membrane fusion requires a large activation energy that is overcome through the action of multiple proteins. Even though biological fusion is very complex, it results in the coalescence of both lipid bilayers that constitute the cores of the involved membranes. Therefore, the activation energy that is necessary to disrupt the leaflet arrangement during lipid bilayer fusion should be similar to that of in vivo membrane fusion.
We developed an experimental protocol which allows determining the activation energy of the fusion of lipid bilayers, thanks to Arrhenius’ law. The relative areas occupied by the polar head and hydrophobic tails of a lipid confers to it a preferential curvature, called spontaneous curvature. Investigating membranes with several lipid compositions, we found that a mismatch between the membrane’s curvature and the spontaneous curvature of the lipid affects both the activation energy and the nucleation of the process. A more negative curvature generates more hydrophobic defects in the initial “flat” membrane which leads to an increase in the frequency of fusion nucleation. During the fusion process, membrane shapes are modified and must locally adopt large curvatures. A mismatch between the spontaneous curvature of the lipid and the one it should adopt in order for fusion to proceed can inhibit the process of fusion and increase its activation energy.

Seminar : Protein trafficking to lipids bodies/droplets during the phases of fat

Abstract : As a major actor of cellular trafficking, COPI coat proteins assemble on membranes and locally bend them to bud 60 nm-size coated particles. Budding requires the energy of the coat assembly to overcome the one necessary to deform the membrane which primarily depends on the bending modulus and surface tension, γ. Using a COPI-induced oil nanodroplet formation approach, we modulated the budding of nanodroplets using various amounts and types of surfactant. We found a Heaviside-like dependence between the budding efficiency and γ: budding was only dependent on γ and occurred beneath 1.3 mN/m. With the sole contribution of γ to the membrane deformation energy, we assessed that COPI supplies ~1500 kBT for budding particles from membranes, which is consistent with common membrane deformation energies. Our results highlight how a simple remodeling of the composition of membranes could mechanically modulate budding in cells.

by Abdou Rachid Thiam.

Seminar : Experimental study of contact line dissipation and wetting dynamics at liquid interfaces

Abstract: An atomic force microscopy (AFM) based hanging fiber probe is developed to investigate contact line dissipation. A universal scaling law, ξ = απdη, is obtained for various liquids (and soap films) of viscosity η and glass fibers of diameter d with different surface chemistries. The proportionality constant α is found to be α = 0.8 ± 0.2, independent of the contact angle and surface tension. The AFM system is also used to study wetting transition and contact angle hysteresis at a DPPC-monolayer interface.
by Shuo Guo from Hong-Kong University of Science and Technology and now at the LPS.

Abdou Rachid Thiam selected for ATIP-Avenir program 2014

Recently recruited at LPS with a position of research assistant at CNRS, Rachid Abdou Thiam was granted with an ATIP-Avenir program 2014 funding. This funding, which includes equipement and human ressources, will enable Mr Thiam to lead a group within the LPS. Abdou Rachid Thiam research focuses on emulsion science based on microfluidics to (1) address lipid metabolism questions by reconstituting the binding and action of lipid droplet proteins on model membranes and (2) understand the contribution of lipid-based surfactants on the physical properties of monolayers and bilayers.

Un seul SNAREpin suffit à la fusion synaptique mais trois sont nécessaires à la libération des neurotransmetteurs

La neurotransmission est un processus dans lequel les neurotransmetteurs sont libérés au niveau de la synapse pour transmettre une information. Ce processus doit être finement régulé tant spatialement que temporellement. Pour cela une machinerie protéique complexe est nécessaire. Cette machinerie est centrée sur les protéines SNAREs qui sont responsables de la fusion de la vésicule synaptique avec la membrane présynaptique. Une protéine SNARE est située sur la vésicule (la v-SNARE) et une autre sur la membrane (un hétérodimère, la t-SNARE). t- et v-SNAREs s’apparient en formant une structure, le « SNAREpin », et forcent le contact membranaire ce qui conduit à la fusion. En utilisant des membranes nanométriques suspendues, appelées nanodisques, Frédéric Pincet au LPS-ENS et une équipe de l’Université de Yale ont démontré que, si un seul SNAREpin est suffisant pour la fusion, il est nécessaire qu’au moins trois SNAREpins coopèrent pour obtenir la libération des neurotransmetteurs.

FIGURE : Un petite vésicule de la taille d’une vésicule synaptique ( 50 nm) et contenant un soluté représentant les neurotransmetteurs, ici du calcium, fusionne avec un nanodisque. Un pore de fusion s’ouvre. Le calcium est libéré au travers de ce pore ce qui rend une molécule, la mag-Fluo-4, fluorescente. Le suivi de la fluorescence permet de visualiser et de quantifier le calcium libéré.

Ils ont aussi montré que la présence des domaines transmembranaires natifs des SNAREs est indispensable à une libération rapide et efficace. Ces résultats mettent fin à une controverse qui sévit depuis plusieurs années et permettent d’expliquer des données apparemment contradictoires parus récemment. Ils ont été publiés dans la revue Science le 16 mars 2012.

communiqué cnrs

Référence : « SNARE Proteins : One to Fuse and Three to Keep the Nascent Fusion Pore Open » Lei Shi, Qing-Tao Shen, Alexander Kiel, Jing Wang, Hong-Wei Wang, Thomas J. Melia, James E. Rothman, Frédéric Pincet, Science 16 mars 2012

 

complexes SNARE